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首頁 > 技術(shù)文章
  • ATP生物發(fā)光技術(shù)的應(yīng)用
    2011-6-1 2151
    ATP生物發(fā)光法的應(yīng)用范圍十分廣泛,現(xiàn)已應(yīng)用于食品行業(yè)的多個(gè)領(lǐng)域。研究表明,ATP生物發(fā)光法與標(biāo)準(zhǔn)的細(xì)菌培養(yǎng)菌落計(jì)數(shù)法相比,二者具有良好的相關(guān)性(r=0.98)[7],但怎樣細(xì)分細(xì)菌種類有一定的難度,還需要做大量的工作。利用這種方法可以對(duì)食品原料、肉類、水產(chǎn)品、蔬菜、飲料、酒類、酸奶等中微生物的含量進(jìn)行定量。此外,采用ATP生物發(fā)光法可快速、簡便地檢測食品生產(chǎn)環(huán)境的清潔度。對(duì)ATP含量的檢測是以相對(duì)發(fā)光值(RelativeLightUnit,簡稱RLU)表示的。隨著RLU值的...

  • 菌種的退化現(xiàn)象及原因
    2011-5-26 2191
    菌種的退化現(xiàn)象隨著菌種保藏時(shí)間的延長或菌種的多次轉(zhuǎn)接傳代,菌種本身所具有的優(yōu)良的遺傳性狀可能得到延續(xù),也可能發(fā)生變異。變異有正變(自發(fā)突變)和負(fù)變兩種,其中負(fù)變即菌株生產(chǎn)性狀的劣化或有些遺傳標(biāo)記的丟失均稱為菌種的退化。但是在生產(chǎn)實(shí)踐中,必須將由于培養(yǎng)條件的改變導(dǎo)致菌種形態(tài)和生理上的變異與菌種退化區(qū)別開來。因?yàn)閮?yōu)良菌株的生產(chǎn)性能是和發(fā)酵工藝條件緊密相關(guān)的。如果培養(yǎng)條件發(fā)生變化,如培養(yǎng)基中缺乏某些元素,會(huì)導(dǎo)致產(chǎn)孢子數(shù)量減少,也會(huì)引起孢子顏色的改變;溫度、pH值的變化也會(huì)使發(fā)酵產(chǎn)量...

  • 醚菊酯檢測方法
    2011-5-24 1852
    醚菊酯檢測方法試驗(yàn)溶液的制備a提取方法①谷類、豆類和種子類將樣品粉碎,通過420μm的標(biāo)準(zhǔn)網(wǎng)篩后,稱取其10.0g,加入10mL水,放置2小時(shí)。加入100mL丙酮,攪拌3分鐘后,用涂布1cm厚硅藻土的濾紙,抽濾于磨口減壓濃縮器中。取出濾紙上的殘留物,加入50mL丙酮,攪拌3分鐘后,按上述同樣操作,合并濾液于減壓濃縮器中,40℃以下濃縮至約30mL。將其移入預(yù)先注入100mL10%氯化鈉溶液的300mL分液漏斗中。用100mL正己烷洗滌上述減壓濃縮器的茄型瓶,合并洗滌液于分液漏...

  • 黃芪甲苷原料藥的制備方法
    2011-5-20 2532
    1)提?。阂渣S芪為原料,用水、低級(jí)醇或含水低級(jí)醇提取,濾過,得到黃芪提取液,其中低級(jí)醇的碳數(shù)為C1~C5,濃度為X,0%<X≤100%;2)濃縮:將所得提取液進(jìn)行濃縮,得到60℃下相對(duì)密度為1.05~1.40的濃縮液;3)堿處理:調(diào)整濃縮液相對(duì)密度為60℃下1.05~1.20,加堿調(diào)溶液pH值為8~14或大于14,常溫放置12~48小時(shí)或于40~100℃加熱處理0.5~24小時(shí);4)分離黃芪甲苷:將所得堿處理溶液,將其用酸調(diào)節(jié)pH值至5~9,再用有機(jī)溶劑萃取,分取有機(jī)溶液層;...

  • 試管的主要用途及注意事項(xiàng)
    2011-5-18 9969
    試管的主要用途及注意事項(xiàng)主要用途:(1)盛取液體或固體試劑;(2)加熱少量固體或液體;(3)制取少量氣體反應(yīng)器;(4)收集少量氣體用;(5)溶解少量氣體、液體或固體的溶質(zhì)。使用注意事項(xiàng):(1)盛取液體時(shí)容積不超過其容積的1/3;(2)加熱使用試管夾、試管口不能對(duì)著人。加熱盛有固體的試管時(shí),管口稍向下傾斜約45°;(3)受熱要均勻,以免暴沸或試管炸裂;(4)加熱后不能驟冷,防止破裂。(5)加熱時(shí)要預(yù)熱,防止試管驟熱而爆裂。(6)加熱時(shí)要保持試管外壁沒有水珠,防止受熱不均勻而爆裂...

  • 原代組織細(xì)胞的解離
    2011-5-17 2035
    膠原酶1.用滅菌的解剖刀或剪刀將組織切成3-4mm大小碎塊。用Hanks平衡鹽溶液(HBSS)將組織碎塊清洗數(shù)次。2.加入膠原酶(50-200單位/ml膠原酶HBSS)。3.在37℃下孵育4-18小時(shí)。加入3mMCaCl2可以提高解離效率。4.用滅菌的不銹鋼網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細(xì)胞懸浮液,將離散的細(xì)胞和組織片段與大塊的組織碎片分離。如需進(jìn)一步解離,可向組織片段中加入新鮮的膠原酶。5.通過離心HBSS清洗細(xì)胞懸浮液數(shù)次。6.用培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。計(jì)算細(xì)胞個(gè)數(shù),然后接種細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)。分散酶...

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